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大腸桿菌化學感受態細胞 表達分析

大腸桿菌化學感受態細胞 表達分析

簡要描述:

大腸桿菌化學感受態細胞 表達分析 大腸桿菌OverExpress C43(DE3)菌株經特殊工藝制作所得的感受態細胞,可用于DNA的熱擊轉化。經pUC19質粒檢測轉化效率可達5×108 cfu/μg DNA。且在-80℃能穩定保存幾個月轉化效率不發生改變。

產品時間:2024-03-14

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OverExpress C43(DE3) Chemically Competent Cell

大腸桿菌化學感受態細胞


產品標簽

OverExpress C43(DE3)C43(DE3) pLysSBL21 (DE3)OverExpress C41(DE3)表達感受態細胞;毒性蛋白表達;pET表達載體;


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產品名稱

規格

價格(元)

MF2342-1000UL

OverExpress C43(DE3) Chemically Competent Cell 大腸桿菌化學感受態細胞

10×100μl

396

MF2342-5000UL

OverExpress C43(DE3) Chemically Competent Cell 大腸桿菌化學感受態細胞

50×100μl

1696


菌株描述

OverExpress C41(DE3)C41(DE3) pLysSC43(DE3)C43(DE3) pLysS都是大腸桿菌(E. Coli)菌株,有效表達不同物種有機生物體包括細菌、酵母菌、植物、病毒和哺乳動物來源的毒性蛋白。

OverExpress C43(DE3)菌株來源于OverExpress C41(DE3)菌株,通過篩選OverExpress C41(DE3)對另一個不同毒性蛋白的抗性菌株而獲得。OverExpress C41(DE3)來源于BL21(DE3),此菌株含一個突變,能降低T7 RNA聚合酶(T7 RNAP)的水平,從而預防許多重組毒性蛋白過表達引起的細胞死亡。OverExpress C43(DE3)與OverExpress C41(DE3)相比,至少攜帶另一個不同突變,使其獲得更廣泛更高的毒性蛋白表達能力。

OverExpress C43(DE3)菌株含DE3區,表明該菌株染色體上整合λ噬菌體DE3溶原體(其上攜帶lacUV5啟動子調控的T7 RNA聚合酶基因),適用于靶基因克隆進入T7啟動子表達載體比如pET系列的蛋白生產。

OverExpress C43(DE3)菌株基因型:FompT hsdSB (rB- mB-) gal dcm (DE3)


產品描述

品是大腸桿菌OverExpress C43(DE3)菌株特殊工藝制作所得的感受態細胞,可用于DNA的熱擊轉化。經pUC19質粒檢測轉化效率可達5×108 cfu/μg DNA。且在-80能穩定保存幾個月轉化效率不發生改變


產品包裝

組分編號

組分名

貨號(規格)

MF2342-1000UL

MF2342-5000UL

MF2342-A

OverExpress C43(DE3) Competent Cell

10×100μl

50×100μl

MF2342-B

Control Plasmid puC19, 10pg/μl

10μl

10μl


注意事項

1) 感受態細胞必須用干冰運輸。感受態細胞應在-80保存,不可反復凍融且放置時間過長,否則會減低感受態細胞的轉化效率。

2) hao在冰上融化感受態細胞,不可在冰上放置時間過長,長時間存放會降低轉化效率

3) 進行轉化操作時,需在相應溫度及無菌條件下進行。

4) 為防止轉化實驗不成功,可保留部分連接反應液以重新轉化,將損失降到低。

5) 產品包裝內含質粒pUC19 DNA(10pg/μl),供對照實驗用

6) 轉化高濃度的質粒可相應減少終用于涂板的菌量。

7) 誘導時,IPTG濃度范圍可選:0.1~2mM

8) 為了得到足量的蛋白,需就加誘導時間、溫度、IPTG濃度進行優化。

9) 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。


使用方法【所有操作均在無菌條件的標準下進行】

1) 從-80冰箱取出取感受態細胞,迅速置于冰浴中,5min后待菌塊融化,加入目的DNA(質粒或連接產物),用手輕彈管底輕輕混勻(避免用槍吸打),冰浴靜置25min。

2) 42水浴熱激45s,迅速將離心管轉移到冰浴中,冰上靜置2min。此過程不要搖動離心管。

3) 向每個離心管中加700 μl無菌的2YT或LB培養基(不含抗生素),混勻后置于37 搖床,200 rpm振蕩培養60min,目的使質粒上相關的抗性標記基因表達,使菌體復蘇。

4) 低速離心收菌(比如5000rpm,1min),留取100μl左右上清,用槍輕輕吹打重懸菌塊,之后加到篩選抗生素2YT或LB固體瓊脂培養基上,用無菌的涂布棒將細胞均勻涂開,將平板置于室溫(或37)直至液體被吸收,倒置培養,37培養過夜

【注意】:

a)涂布用量可根據具體實驗調整。若轉化的DNA總量較多,可不用離心,直接取少量轉化產物涂布平板;反之,若轉化的DNA總量較少,則通過離心(5000 rpm,1min)后吸除部分培養液,懸浮菌體后將其涂布于一個平板中。

b)新制備的固體培養基不易涂干,可將平板正置于37直至液體被吸收后再倒置培養。

c)涂布剩余的菌液可置于4保存,如果次日的轉化菌落數過少,可以將剩下的菌液再涂布新培養基進行培養。


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10×100μl

MS0021-10G

Chloramphenicol, USP Grade 氯mei素

10g

MS0018-10G

Ampicillin, Sodium Salt 氨芐青mei素鈉

10g

MS0017-5G

Carbenicillin, Disodium Salt 羧芐青mei素二鈉鹽

5g

MS0019-10G

Kanamycin Sulfate 硫酸卡那mei素

10g

MS0014-1G

Rifampicin, USP Grade 利fu平

1g

MF2002-1G

IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷

1g


附錄I 蛋白誘導步驟(僅作參考)

1)從新鮮涂布平板上挑取一單克隆,轉移到含相應抗生素的5ml LB液體培養基內。

2)37℃搖菌培養過液。為了小化誘導前目的蛋白的小化表達,添加葡萄糖(終濃度為0.2% w/v)到生長培養基內。

3)將步驟2)中過夜培養的菌液吸取0.5ml接種到含相應抗生素的50ml LB液體培養基內。

4)37℃搖菌培養直至OD600達到0.6~0.8。

5)加入IPTG使其終濃度為1mM。目的蛋白的加誘導時間可能在2~16h,依蛋白而異。

6)37℃培養3~4h。為了確定目的蛋白的加誘導時間,建議作一個時間周期優化實驗,范圍從2~16h。

7)將培養物冰浴10min。4℃,5,000 x g離心10min收集菌株。

8)吸掉上清,將沉淀保存在-20℃(也能保存在更低的溫度)。


IPTG母液(1M)配制

稱量2.38g IPTG(Mw: 238.30)溶于適量去離子水,充分溶解后,調整終體積到10ml,并過濾除菌,即得到1M ITPG母液。


— —Written/Edited by V. Shallan【版權歸MKBio懋康所有】


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大腸桿菌化學感受態細胞 表達分析

大腸桿菌化學感受態細胞 表達分析


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